Moleküler biyoloji laboratuvarlarında yüksek lisans yapmanın yazılı olmayan ilk kuralı şudur: Her Escherichia coli aynı değildir. Klonlama yaparken hücre çeperini nazikçe geçtiğiniz o DH5\alfa suşu, iş protein ekspresyonuna geldiğinde tam bir hayal kırıklığına dönüşebilir. Çünkü klonlama suşları plazmidi korumak ve çoğaltmak için evrimleşmişken, ekspresyon suşları protein fabrikası gibi çalışmak üzere genetik olarak modifiye edilmiştir.
Tez konunuz veya projeniz kapsamında bir rekombinant proteini yüksek verimle ve çözünür (soluble) formda üretmek istiyorsanız, genotiplerin o karmaşık dünyasında doğru suşu seçmek zorundasınız. Gelin; laboratuvar tezgahındaki o meşhur petri kaplarının arkasındaki genetik şifreleri çözelim ve proteininizin karakterine en uygun E. coli işçisini birlikte seçelim.
Temel Fabrika: BL21 ve BL21(DE3) Kültü
Eğer proteininiz özel bir modifikasyon veya nadir kodon optimizasyonu gerektirmeyen, nispeten "uysal" bir protein ise, ilk seçeceğiniz suş BL21 veya onun türevleridir.
- Neden BL21? Bu suş, E. coli’nin B serisinden türetilmiştir ve iki kritik endojen proteazdan yoksundur: Lon (sitoplazmik proteaz) ve OmpT (dış zar proteazı). Bu proteazların genetik olarak nakavt edilmiş olması, sentezlediğiniz rekombinant proteinin daha hücre içindeyken parçalanmasını (proteolizis) engeller.
- DE3 Ne Anlama Gelir? Eğer plazmidiniz T7 promotör sistemine (örneğin pET vektörleri) sahipse, düz bir BL21 işinize yaramaz. BL21(DE3) kullanmalısınız. "DE3" ibaresi, bakterinin genomuna lambda pro-fajı aracılığıyla T7 RNA Polimeraz geninin entegre edildiğini gösterir. Siz ortama IPTG eklediğinizde, bakterinin kendi kromozomundan T7 RNA polimeraz sentezlenir ve gidip sizin plazmidinizdeki T7 promotörünü çılgınca çalıştırır.
Toksik Proteinlerle Mücadele: BL21 pLysS ve Tuner Suşları
Yüksek lisans öğrencilerinin en büyük kabuslarından biri, eksprese etmek istedikleri proteinin E. coli için toksik olmasıdır. Hücreler büyür ama IPTG indüksiyonu yapıldığı an (ya da daha indüksiyon yapmadan) kültür ölmeye başlar. Çünkü T7 sistemi bazal düzeyde de olsa "sızdırır" (leaky expression). Siz daha indüksiyon yapmadan üretilen az miktardaki toksik protein, bakteriyi öldürür.
- BL21 pLysS: Bu suş, içinde T7 lizozim enzimini kodlayan küçük bir plazmid (pLys) barındırır. T7 lizozimi, ortamda IPTG yokken sızan T7 RNA polimeraz moleküllerine bağlanarak onları inhibe eder. Böylece indüksiyon öncesi protein sentezi tamamen sıfırlanır. IPTG eklediğinizde ise bariyer aşılır ve kontrollü ekspresyon başlar.
- Tuner(DE3): Eğer ekspresyonu "hep ya da hiç" şeklinde değil de, bir vanayı açar gibi milimetrik olarak ayarlamak istiyorsanız Tuner suşunu seçmelisiniz. Bu suş, laktoz permeaz (lacY) mutasyonuna sahiptir. Bu sayede IPTG hücre içine aktif taşıma ile değil, difüzyonla homojen olarak girer. IPTG konsantrasyonunu değiştirerek protein üretim hızını regüle edebilir, böylece proteinin toksisitesini veya agresif üretimden kaynaklı çökelmesini engelleyebilirsiniz.
İşte ökaryotik bir proteini (örneğin bir insan veya bitki proteinini) E. coli'de üretirken duvara tosladığımız o meşhur nokta: Kodon Yanlılığı (Codon Bias).
Kodon Uyuşmazlığı ve Nadir Kodon Çözümleri: Rosetta ve BL21 CodonPlus
İşte ökaryotik bir proteini (örneğin bir insan veya bitki proteinini) E. coli'de üretirken duvara tosladığımız o meşhur nokta: Kodon Yanlılığı (Codon Bias).
İnsan genomunda arginin, lösin, izolösin, prolin ve glisin için sıkça kullanılan bazı kodonlar, E. coli'nin tRNA havuzunda son derece nadir bulunur (örn: AGG/AGA için Arginin, AUA için İzolösin). Bakteri ribozomu bu kodonlara geldiğinde uygun tRNA bulamaz, duraksar ve sentezi yarıda keser (truncation) ya da yanlış amino asit yerleştirir.
- Rosetta(DE3): Genomunda, E. coli'de nadir bulunan 6 adet ökaryotik tRNA genini (AUA, AGG, AGA, CUA, CCC, GGA) taşıyan uyumlu bir plazmid barındırır. Protein diziniz kodon optimizasyonlu değilse, Rosetta yüksek lisans tezinizin kurtarıcısı olacaktır.
- BL21 CodonPlus: Benzer şekilde stratejik tRNA kopyalarını içerir. Özellikle AT-zengin veya GC-zengin organizmaların genlerini eksprese ederken ribozom duraklamalarını ortadan kaldırır.
Disülfit Bağları ve Doğru Katlanma (Folding): Origami ve SHuffle Suşları
Protein ekspresyonunda tek amaç yüksek miktarda protein üretmek değildir; proteinin biyolojik olarak aktif (functional) olması gerekir. Birçok ökaryotik protein, kararlı üç boyutlu yapıya ulaşabilmek için sistein amino asitleri arasında disülfit bağlarına (S-S) ihtiyaç duyar. Ancak E. coli sitoplazması aşırı indirgeyici (reducing) bir ortamdır ve burada disülfit bağları oluşamaz; oluşanlar da hemen yıkılır. Protein yanlış katlanır ve çözünmeyen inklüzyon cisimciği (inclusion body) olarak çöker.
Origami(DE3): Bu suş, sitoplazmayı indirgeyici tutan iki temel enzim olan thioredoxin reductase (trxB) ve glutathione reductase (gor) genlerinde mutasyona sahiptir. Bu sayede sitoplazma daha oksidatif bir hale gelir ve protein daha sentezlenirken sitoplazma içinde disülfit bağları kurulabilir.
SHuffle: New England Biolabs tarafından geliştirilen bu suş, Origami'nin bir adım ötesidir. trxB/gor mutasyonlarına ek olarak, periplazmada bulunan ve disülfit bağlarının doğru eşleşmesini denetleyen DsbC şaperon/izomeraz enzimini sitoplazmada eksprese edecek şekilde modifiye edilmiştir. Eğer proteininiz antikor fragmanı (scFv) veya karmaşık disülfit bağları içeren bir enzimse, SHuffle suşu sizin için biçilmiş kaftandır.
Sonuç: Karar Matrisi
Yüksek lisans projenize başlarken kendinize şu soruları sorun ve rotanızı belirleyin:
- Vektörüm T7 sistemine mi ait? DE3 türevlerini seçin.
- Genim ökaryotik kökenli mi ve kodon optimizasyonu yapılmadı mı? Rosetta kullanın.
- Protein yapısında çok sayıda disülfit bağı var mı? SHuffle veya Origami test edin.
- Protein hücreyi öldürüyor mu? pLysS ile kaçak ekspresyonu baskılayın veya indüksiyon sıcaklığını 18 derece'ye düşürerek Tuner suşunu deneyin.
Unutmayın, rekombinant protein ekspresyonu biraz da deneme-yanılma sanatıdır. Laboratuvar günlüğünüze suşların genotiplerini ve sonuçlarını titizlikle kaydetmek, tezinizin savunma gününde jürinin karşısına alnınız ak çıkmanızı sağlayacaktır.
Referanslar
- Bhatwa, A., Jens, W., Dunnett, P., & van Dijl, J. M. (2021). Optimization of recombinant protein production in Escherichia coli. International Journal of Molecular Sciences, 22(14), 7432. https://doi.org/10.3390/ijms22147432
- Burgess-Brown, N. A., Sharma, S., Sobott, F., Loenarz, C., Oppermann, U., & Gileadi, O. (2008). Codon optimization can improve expression of human genes in Escherichia coli: A multi-gene study. Protein Expression and Purification, 59(1), 94-102. https://doi.org/10.1016/j.pep.2008.01.008 (Rosetta ve CodonPlus mekanizmaları için)
- Gopal, G. J., & Kumar, A. (2013). Strategies for the production of soluble recombinant proteins in Escherichia coli. International Journal of Cell Biology, 2013, 1-11. https://doi.org/10.1155/2013/919504 (İnklüzyon cisimcikleri ve çözünürlük sorunları için)
- Lobstein, J., Emrich, C. A., Jeans, C., Faulkner, M., Riggs, P., & Berkmen, M. (2012). SHuffle, a novel Escherichia coli protein expression strain capable of correctly folding disulfide-bonded proteins in its cytoplasm. Microbial Cell Factories, 11(1), 56. https://doi.org/10.1186/1475-2859-11-56 (SHuffle suşunun orijinal mühendislik makalesi)
- Prinz, W. A., Aslund, F., Holmgren, A., & Beckwith, J. (1997). The role of the thioredoxin and glutaredoxin pathways in reducing disulfide bonds in the Escherichia coli cytoplasm. Journal of Biological Chemistry, 272(25), 15661-15667. https://doi.org/10.1074/jbc.272.25.15661 (Origami suşunun temelini oluşturan trxB/gor mutasyonlarının mekanizması)
- Rosano, G. L., & Ceccarelli, E. A. (2014). Recombinant protein expression in Escherichia coli: Advances and challenges. Frontiers in Microbiology, 5, 172. https://doi.org/10.3389/fmicb.2014.00172
- Schumann, W., & Ferreira, L. C. (2004). Production of recombinant proteins in Escherichia coli. Genetics and Molecular Biology, 27(3), 442-453. https://doi.org/10.1590/S1415-47572004000300022
- Singha, T. K., Gulati, P., Antony, A., & Kapoor, V. (2017). Insights into T7 RNA polymerase compatible expression systems in Escherichia coli for recombinant protein production. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 15(2), 293-299. https://doi.org/10.1016/j.jgeb.2017.07.009 (DE3 ve pLysS sistemlerinin mekanizması)
- Studier, F. W. (2005). Protein production by auto-induction in high-density shaking cultures. Protein Expression and Purification, 41(1), 207-234. https://doi.org/10.1016/j.pep.2005.01.016 (Otomatik indüksiyon ve lacY ilişkisi için temel makale)
- Terpe, K. (2006). Overview of bacterial expression systems for heterologous protein production: From molecular biology to commercialized product. Applied Microbiology and Biotechnology, 72(2), 211-222. https://doi.org/10.1007/s00253-006-0465-8
Henüz yorum yapılmadı. İlk yorumu sen bırakabilirsin.